Морфологическая дифференциация молоди амурской осенней кеты Оncorhynchus keta (Salmonidae) естественного и заводского происхождения
https://doi.org/10.36038/0234-2774-2022-23-4-221-229
Аннотация
В работе представлены результаты сравнительного анализа числа миомеров и лучей в спинном и анальном плавниках молоди амурской осенней кеты Oncorhynchus keta искусственного и естественного происхождения. Молодь естественного происхождения отличалась большими значениями проанализированных признаков. Результаты могут быть использованы для детерминации молоди кеты естественного и искусственного происхождения на внутрибассейновом уровне для крупных притоков р. Амур.
Ключевые слова
кета,
морфологические маркеры,
миомеры,
плавниковые лучи,
искусственное воспроизводство,
промысловый возврат
Об авторах
П. Б. Михеев
Хабаровский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (ХабаровскНИРО); ФГАОУ ВО «Пермский Государственный Национальный Исследовательский Университет» (ПГНИУ)
Россия
Россия
г. Хабаровск, 680038
г. Пермь, 614096
М. Д. Полыгалова
ФГАОУ ВО «Пермский Государственный Национальный Исследовательский Университет» (ПГНИУ)
Россия
Россия
г. Пермь, 614096
А. С. Помелова
ФГАОУ ВО «Пермский Государственный Национальный Исследовательский Университет» (ПГНИУ)
Россия
Россия
г. Пермь, 614096
Н. В. Костицына
ФГАОУ ВО «Пермский Государственный Национальный Исследовательский Университет» (ПГНИУ)
Россия
Россия
г. Пермь, 614096
Е. В. Подорожнюк
Хабаровский филиал Всероссийского научно-исследовательского института
рыбного хозяйства и океанографии (ХабаровскНИРО)
Россия
Россия
г. Хабаровск, 680038
Список литературы
1. Запорожец Г.В., Запорожец О.М. Лососевые рыбоводные заводы Дальнего Востока в экосистемах Северной Пацифики. Петропавловск-Камчатский: Камчатпресс, 2011. 268 с. (Электронный ресурс) UPD: http:// www.npacific.ru/np/library, дата обращения 12.04.2022 г.
2. Зуев И.В., Зуева А. В. Оценка эффективности мечения рыб флуоресцентными красителями на различной полимерной основе // Вестник Томского государственного университета. Биология. 2015. Вып. 1. № 29. С. 103–112.
3. Касьянов А.Н. Изучение некоторых меристических признаков у черноморско-каспийской тюльки Clupeonella cultriventris (Clupeidae), вселившейся в Волжские водохранилища // Вопр. Ихтиологии. 2009. Т. 49. № 5. С. 661–668.
4. Леман В.Н., Смирнов Б. П., Точилина Т.Г. Пастбищное лососеводство на Дальнем Востоке: современное состояние и существующие проблемы // Труды ВНИРО. 2015. Т. 153. С. 105–120.
5. Павлов Д.А. Морфологическая изменчивость в раннем онтогенезе костистых рыб и её эволюционное значение: автореф. дис. … д-ра биол. наук. М., 2004. 40 с.
6. Павлов Д.А. Морфологическая изменчивость в раннем онтогенезе костистых рыб. М.: ГЕОС, 2007. 264 с.
7. Пичугин М.Ю. Особенности роста и развития скелета ранней молоди северной мальмы Salvelinus malma malma из рек западной Камчатки в связи с температурным режимом нерестилищ // Вопр. ихтиологии. 2015. Т. 55. № 4. С. 435–452.
8. Попова Т.А., Чебанов Н.А. Динамика миграции покатной молоди тихоокеанских лососей разных форм воспроизводства (западная Камчатка) // Исследования водных биологических ресурсов Камчатки и северо-западной части Тихого океана. 2007. Вып. 9. С. 164–169.
9. Растягаева Н.А. Некоторые результаты идентификации лососей различного происхождения и определения их возрастной структуры разными методами // Вестник КамчатГТУ. 2013. Вып. 23. С. 72–77.
10. Стекольщикова М.Ю. Некоторые результаты мониторинга заводских стад горбуши в зал. Анива (о. Сахалин) // «Стратегия развития рыбохозяйственного комплекса Российской Федерации на период до 2030 года». Проект. 2017. По материалам сайта http://fish.gov.ru/files/documents/files/proekt-strategiya-2030.pdf. Дата обращения 11 Ноября 2020 года.
11. Ando D., Shimoda K., Takeuchi K. et al. Comparison of vertebral number between wild and hatchery-reared population, and effect of stock enhancement programs on vertebral number in masu salmon Oncorhynchus masou // Nippon Suisan Gakkaishi. 2019. V. 85. Issue 5. P. 487–493.
12. Beacham T.D., Murray C.B. The effect of spawning time and incubation temperature on meristic variation in chum salmon (Oncorhynchus keta) // Canadian J. Zoology. 1986. V. 64. N.1. P. 45–48. https://doi.org/10.1139/z86-007
13. Fahy W.E. The influence of temperature change on number of dorsal fin rays developing in Fundulus majalis (Walbaum) // ICES J. Marine Science. 1980., V. 39. Issue 1. P. 104–109. https:// doi.org/10.1093/icesjms/39.1.104
14. Jordaan A., Hayhurst S.E., Kling L.J. The influence of temperature on the stage at hatch of laboratory reared Gadus morhua and implications for comparisons of length and morphology // J. Fish Biology. 2006. N 68. № 1. P. 7–24.
15. Keefer M.L., Caudill C.C. Homing and straying by anadromous salmonids: a review of mechanisms and rates // Rev. Fish. Biol. Fisheries. 2014. N 24. P. 333–368. https://doi.org/10.1007/s11160-013-9334-6
16. Kitada S., Kishino H. Fitness decline in hatchery-enhanced salmon populations is manifested by global warming. 2019. http://biorxiv.org/cgi/content/short/828780v1
17. Martsikalis, P.V., Kavouras, M., Gkafas, G.A. et al. Morphological and free amino acid profile variability, as a tool for stock identification among farmed rainbow trout Oncorhynchus mykiss of different origin // Aquac. Res. 2018. N 49. P. 621– 630. https://doi.org/10.1111/are.13491
18. NPAFC (The North Pacific Anadromous Fish Commission). NPAFC Statistics: Pacific Salmonid Catch and Hatchery Release Data. 2019. Accessed from https://npafc.org/statistics/ on October 1, 2022.
19. R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing. 2022.Vienna, Austria. URL http://www.R-project.org.
20. Ruggerone, G.T., Irvine, J.R. Numbers and biomass of natural and hatchery origin pink salmon, chum salmon, and sockeye salmon in the north Pacific Ocean, 1925–2015 // Marine and Coastal Fisheries. 2018. N 10. P. 152–168. https:// doi.org/10.1002/mcf2.10023
21. Taylor, E.B. Differences in morphology between wild and hatchery populations of juvenile coho salmon // Progressive Fish-Culturist. 1986. V. 48. N 3. P. 171–176.
22. Wessel, M.L., Smoker, W.W., and Joyce, J.E. Variation of morphology among juvenile Chinook salmon of hatchery, hybrid, and wild origin // Transactions of the American Fisheries Society. 2006. N 135. P. 333–340.
Рецензия
Для цитирования:
Михеев П.Б., Полыгалова М.Д., Помелова А.С., Костицына Н.В., Подорожнюк Е.В. Морфологическая дифференциация молоди амурской осенней кеты Оncorhynchus keta (Salmonidae) естественного и заводского происхождения. Вопросы рыболовства. 2022;23(4):221-229. https://doi.org/10.36038/0234-2774-2022-23-4-221-229
For citation:
Mikheev P.B., Polygalova M.D., Pomelova A.S., Kostitsyna N.V., Podorozhniuk E.V. Morphological differentiation of Amur fall Chum salmon juveniles Oncorhynchus keta (Salmonidae) of natural and hatchery origin. Problems of Fisheries. 2022;23(4):221-229. (In Russ.) https://doi.org/10.36038/0234-2774-2022-23-4-221-229
Послать статью по эл. почте 