Morphological differentiation of Amur fall Chum salmon juveniles Oncorhynchus keta (Salmonidae) of natural and hatchery origin
https://doi.org/10.36038/0234-2774-2022-23-4-221-229
Abstract
The results of a comparative analysis of the number of myotomes and fin rays in the dorsal and anal fins of Amur fall chum salmon fry of artificial and natural origin are presented. Juveniles of natural origin were distinguished by large values of the analyzed morphological features. The results can be used for the determination of juvenile chum salmon of natural and artificial origin at the intra-basin level for large tributaries of the Amur River.
About the Authors
P. B. MikheevRussian Federation
Khabarovsk, 680038
M. D. Polygalova
Russian Federation
Perm, 614096
A. S. Pomelova
Russian Federation
Perm, 614096
N. V. Kostitsyna
Russian Federation
Perm, 614096
E. V. Podorozhniuk
Russian Federation
Perm, 614096
References
1. Запорожец Г.В., Запорожец О.М. Лососевые рыбоводные заводы Дальнего Востока в экосистемах Северной Пацифики. Петропавловск-Камчатский: Камчатпресс, 2011. 268 с. (Электронный ресурс) UPD: http:// www.npacific.ru/np/library, дата обращения 12.04.2022 г.
2. Зуев И.В., Зуева А. В. Оценка эффективности мечения рыб флуоресцентными красителями на различной полимерной основе // Вестник Томского государственного университета. Биология. 2015. Вып. 1. № 29. С. 103–112.
3. Касьянов А.Н. Изучение некоторых меристических признаков у черноморско-каспийской тюльки Clupeonella cultriventris (Clupeidae), вселившейся в Волжские водохранилища // Вопр. Ихтиологии. 2009. Т. 49. № 5. С. 661–668.
4. Леман В.Н., Смирнов Б. П., Точилина Т.Г. Пастбищное лососеводство на Дальнем Востоке: современное состояние и существующие проблемы // Труды ВНИРО. 2015. Т. 153. С. 105–120.
5. Павлов Д.А. Морфологическая изменчивость в раннем онтогенезе костистых рыб и её эволюционное значение: автореф. дис. … д-ра биол. наук. М., 2004. 40 с.
6. Павлов Д.А. Морфологическая изменчивость в раннем онтогенезе костистых рыб. М.: ГЕОС, 2007. 264 с.
7. Пичугин М.Ю. Особенности роста и развития скелета ранней молоди северной мальмы Salvelinus malma malma из рек западной Камчатки в связи с температурным режимом нерестилищ // Вопр. ихтиологии. 2015. Т. 55. № 4. С. 435–452.
8. Попова Т.А., Чебанов Н.А. Динамика миграции покатной молоди тихоокеанских лососей разных форм воспроизводства (западная Камчатка) // Исследования водных биологических ресурсов Камчатки и северо-западной части Тихого океана. 2007. Вып. 9. С. 164–169.
9. Растягаева Н.А. Некоторые результаты идентификации лососей различного происхождения и определения их возрастной структуры разными методами // Вестник КамчатГТУ. 2013. Вып. 23. С. 72–77.
10. Стекольщикова М.Ю. Некоторые результаты мониторинга заводских стад горбуши в зал. Анива (о. Сахалин) // «Стратегия развития рыбохозяйственного комплекса Российской Федерации на период до 2030 года». Проект. 2017. По материалам сайта http://fish.gov.ru/files/documents/files/proekt-strategiya-2030.pdf. Дата обращения 11 Ноября 2020 года.
11. Ando D., Shimoda K., Takeuchi K. et al. Comparison of vertebral number between wild and hatchery-reared population, and effect of stock enhancement programs on vertebral number in masu salmon Oncorhynchus masou // Nippon Suisan Gakkaishi. 2019. V. 85. Issue 5. P. 487–493.
12. Beacham T.D., Murray C.B. The effect of spawning time and incubation temperature on meristic variation in chum salmon (Oncorhynchus keta) // Canadian J. Zoology. 1986. V. 64. N.1. P. 45–48. https://doi.org/10.1139/z86-007
13. Fahy W.E. The influence of temperature change on number of dorsal fin rays developing in Fundulus majalis (Walbaum) // ICES J. Marine Science. 1980., V. 39. Issue 1. P. 104–109. https:// doi.org/10.1093/icesjms/39.1.104
14. Jordaan A., Hayhurst S.E., Kling L.J. The influence of temperature on the stage at hatch of laboratory reared Gadus morhua and implications for comparisons of length and morphology // J. Fish Biology. 2006. N 68. № 1. P. 7–24.
15. Keefer M.L., Caudill C.C. Homing and straying by anadromous salmonids: a review of mechanisms and rates // Rev. Fish. Biol. Fisheries. 2014. N 24. P. 333–368. https://doi.org/10.1007/s11160-013-9334-6
16. Kitada S., Kishino H. Fitness decline in hatchery-enhanced salmon populations is manifested by global warming. 2019. http://biorxiv.org/cgi/content/short/828780v1
17. Martsikalis, P.V., Kavouras, M., Gkafas, G.A. et al. Morphological and free amino acid profile variability, as a tool for stock identification among farmed rainbow trout Oncorhynchus mykiss of different origin // Aquac. Res. 2018. N 49. P. 621– 630. https://doi.org/10.1111/are.13491
18. NPAFC (The North Pacific Anadromous Fish Commission). NPAFC Statistics: Pacific Salmonid Catch and Hatchery Release Data. 2019. Accessed from https://npafc.org/statistics/ on October 1, 2022.
19. R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing. 2022.Vienna, Austria. URL http://www.R-project.org.
20. Ruggerone, G.T., Irvine, J.R. Numbers and biomass of natural and hatchery origin pink salmon, chum salmon, and sockeye salmon in the north Pacific Ocean, 1925–2015 // Marine and Coastal Fisheries. 2018. N 10. P. 152–168. https:// doi.org/10.1002/mcf2.10023
21. Taylor, E.B. Differences in morphology between wild and hatchery populations of juvenile coho salmon // Progressive Fish-Culturist. 1986. V. 48. N 3. P. 171–176.
22. Wessel, M.L., Smoker, W.W., and Joyce, J.E. Variation of morphology among juvenile Chinook salmon of hatchery, hybrid, and wild origin // Transactions of the American Fisheries Society. 2006. N 135. P. 333–340.
Review
For citations:
Mikheev P.B., Polygalova M.D., Pomelova A.S., Kostitsyna N.V., Podorozhniuk E.V. Morphological differentiation of Amur fall Chum salmon juveniles Oncorhynchus keta (Salmonidae) of natural and hatchery origin. Problems of Fisheries. 2022;23(4):221-229. (In Russ.) https://doi.org/10.36038/0234-2774-2022-23-4-221-229