On the possibility of using the larvae of Dibothriocephalus nihonkaiensis and Anisakis simplex to differentiate local unit of stock of pink salmon of Southern Sakhalin
https://doi.org/10.36038/0234-2774-2023-24-4-34-44
Abstract
The paper identifies the theoretical possibility of using larvae of Anisakis simplex and Dibothriocephalus nihonkaiensis as biological tags for distinguishing local pink salmon herds of southern Sakhalin. Differences in the infestation of pink salmon generations of even and odd years have been established. The differences in the infection of the Japanese-Sea and Pacific local groups of fish were revealed.
About the Authors
E. V. Frolov
Sakhalin branch of the Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography
Russian Federation
Russian Federation
Yuzhno-Sakhalinsk, 693023
S. V. Novokrestennykh
Sakhalin branch of the Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography
Russian Federation
Russian Federation
Yuzhno-Sakhalinsk, 693023
References
1. Антонов А.А. Биология и динамика численности горбуши зал. Анива (о. Сахалин): Автореф. дис. … канд. биол. наук. Владивосток: ТИНРО-центр, 2005. 23 с.
2. Антонов А.А., Буслов А.В., Брагина И.Ю. и др. Результаты мечения горбуши у юго-восточного побережья острова Сахалин в 2014 г. // Бюл. № 9 изучения тихоокеанских лососей на Дальнем Востоке. Владивосток. ТИНРОцентр. 2014. С. 154–157.
3. Ахмеров А.Х. Гельминты как биологический индикатор локальных стад амурских проходных лососей (Oncorhynchus) // Вопр. ихтиологии, 1963. Т. 3. С. 536–555.
4. Бакай А.И. Сообщества паразитов как индикаторы экологии, внутривидовой и надвидовой структуры морских окуней рода Sebastes (Scorpaeniformes: Sebastidae) Атлантического и Северного Ледовитого океанов: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Москва: ВНИРО, 2021. 48 c.
5. Быховская-Павловская И.Е. Паразиты рыб. Руководство по изучению. М.: Наука, 1985. 121 с.
6. Вялова Г.П., Иванова И.М., Стексова В.В. и др. Горбуша Сахалино–Курильского региона: дифференциация и популяционный состав морских скоплений // Сб. тр. СахНИРО. 1999. Т. 2. С. 52–58.
7. Глубоковский М.К., Животовский Л.А., Викторовский Р.М. Популяционная организация горбуши // Генетика. 1989. Т. 25. № 7. С. 1275–1285.
8. Гриценко О.Ф. О популяционной структуре горбуши Oncorhynchys gorbuscha (Walb) // Вопр. ихтиологии, 1981. Т. 21. Вып. 5. С. 787–799.
9. Животовский Л.А., Шайхаев Е.Г., Шитова М.В. Идентификация биологических образцов лососевых рыб по микросателлитным маркерам с использованием идентичного набора ПЦР-праймеров // Биол. моря, 2013. Т. 39. № 6. С. 459–466.
10. Иванова И.М. Видовой состав, биологическая структура и динамика уловов лососей рода Oncorhynchus в прибрежье юго-западного Сахалина // Труды СахНИРО. 2003. Т. 5. С. 64–84.
11. Каев А.М., Рослый Ю.С. Мечение осенней кеты в лимане реки Амур // Рыбн. хозяйство. 1987. № 2. С. 21–23.
12. Каев А.М. Временная структура миграционного потока горбуши Oncorhynchus gorbuscha в Охотское море // Изв. ТИНРО. 2002. Т. 130. № 3. С. 904–920.
13. Каев А.М. Темпоральная структура и некоторые вопросы динамики стада горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Salmonidae) // Вопр. ихтиологии, 2012. Т. 52. № 1. С. 62–71.
14. Каев А.М., Животовский Л.А. Новые данные к дискуссии о локальных и флюктуирующих стадах горбуши Oncorhynchus gorbuscha // Изв. ТИНРО. 2016. Т. 187. С. 122–144.
15. Каев А.М., Ромасенко Л.В., Каев Д.А. Сравнительная характеристика роста чешуи у горбуши из возвратов на острова Сахалин (юго-восточное побережье) и Итуруп в 2017 и 2018 гг. // Изв. ТИНРО. 2020. Т. 200. № 4. С. 809–818.
16. Кириллова Е.А., Кириллов П.А., Кузищин К.В. и др. Морфобиологическая разнокачественность и особенности воспроизводства горбуши Oncorhynchus gorbuscha из двух рек северо-востока острова Сахалин // Вопр. ихтиологии, 2018. Т. 58. № 6. С. 670–683.
17. Коновалов. С.М. Об использовании паразитологических данных для разграничения локальных стад дальневосточных лососей // Паразитологический сб. ЗИН АН СССР. 1967. Т. 23. С. 236–249.
18. Лапшина А.Е. Генетические исследования тихоокеанских лососей в Сахалинской области: перспективы, приоритеты, наработки. / Отчет о НИР, СахНИРО, 2023. 70 с.
19. Мамаев Ю.Л., Парухин А.М., Баева О.М. и др. Гельминтофауна дальневосточных лососей в связи с вопросом о локальных стадах и путях миграции этих рыб // Владивосток: Примориздат, 1959. 74 с.
20. Муратов И.В., Семенова И.В. Дифиллоботриоз на Дальнем Востоке СССР // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1990. Вып. 6. С. 54–58.
21. Пустовойт С.П. Морфометрическое изучение пространственной структуры азиатских популяций горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Walbaum) // Рыбоводство и рыбное хозяйство, 2022. № 2. С. 124–137.
22. Стекольщикова М.Ю. Некоторые результаты мониторинга заводских стад горбуши зал. Анива (о. Сахалин) // Изв. ТИНРО. 2015. Т. 183. С. 51–60.
23. Стекольщикова М.Ю., Акиничева Е.Г., Костюченко К.М. Отолитное маркирование как инструмент изучения тихоокеанских лососей и управления их запасами // Тез. докл. науч. конф. г. Южно-Сахалинск, 2018. С. 32.
24. Шипунов А.Б., Балдин Е.М., Волкова П.А. и др. Наглядная статистика. Используем R. ДМК Пресс, 2012. 298 с.
25. Bishop Y., Margolis L. A statistical examination of Anisakis larvae (Nematoda) in herring (Clupea harengus) of the British Columbia coast // J. Fish. Res. Board Can. 1955. V. 12. P. 571–592.
26. Braicovich P.E., Luque J.L., Timi J.T. Geographical patterns of parasite infracommunities in the rough scad, Trachurus lathami Nichols, in the southwestern Atlantic Ocean // J. Parasitol. 2012. V. 98. № 4. P. 768–777.
27. Gibson D.I. Flounder Parasites as Biological Tags. // J. Fish Biology. 1972. V. 4. № 1. P. 1–9.
28. Herrington W. Observations on the life history, occurrence and distribution of the redfish parasite Sphyrion lumpi // U. S. Dept. Commerc. Bur. Fish. 1939. № 7855. P. 1–12.
29. Henriquez V.P., Gonzalez M.T., Licandeo R. et al. Metazoan parasite communities of rock cod Eleginops maclovinus along southern Chilean coast and their use as biological tags at a local spatial scale // J. Fish Biol. 2011. V. 79. № 7. P. 1851–1865.
30. MacKenzie K., Abaunza P. Parasites as Biological Tags. Stock Identification Methods // Amsterdam: Elsevier Academic Press, 2014. P. 185–203.
31. Manly B.F.J. Randomization, Bootstrap and Monte Carlo Methods in Biology, second ed. London: Chapman & Hall, 1997. 424 p.
32. Moser M. Parasites as biological tags. // Parasitology Today. 1991. V. 7. № 7. P. 182–185.
33. Mosquera J., Decastro M., Gómez-Gesteira M. Parasites as Biological Tags of Fish Populations: Advantages and Limitations // Theoretical Biology. 2003. V. 8. № 1. P. 69–91. Mattiucci S. Parasites as biological tags in population studies of demersal and pelagic fish species // Parassitologia. 2006. V. 48. P. 23–25.
34. Niklitschek E.J., Secor D.H., Toledo P. et al. Segregation of SE Pacific and SW Atlantic southern blue whiting stocks: integrating evidence from complementary otolith microchemistry and parasite assemblage approaches // Environ. Biol. Fishes. 2010. V. 89. P. 399–413.
35. Poblete L.G., Saavedra J.C., Céspedes R. et al. Parasites of Merluccius australis as biological tags to determine the hake ecological stocks in the sea channels of Chilean Patagonia // Estuarine, Coastal and Shelf Science. 2022. V. 278. P. 108–117.
36. Reed C., Mackenzie K., Van der Lingen C.D. Parasites of South African sardines, Sardinops sagax, and an assessment of their potential as biological tags // Bulletin-European Association of Fish Pathologists. 2012. V. 32. № 2. P. 41–48.
37. Rosza L., Reiczigel J., Majoros G. Quantifying parasites in samples of hosts. J. Parasitol. 2000. V. 86. № 2. P. 228–232.
Review
For citations:
Frolov E.V., Novokrestennykh S.V. On the possibility of using the larvae of Dibothriocephalus nihonkaiensis and Anisakis simplex to differentiate local unit of stock of pink salmon of Southern Sakhalin. Problems of Fisheries. 2023;24(4):34-44. (In Russ.) https://doi.org/10.36038/0234-2774-2023-24-4-34-44
Email this article 