Оценка безопасности и эффективности обработки икры радужной форели Oncorhynchus mykiss (salmoniformes) йодинолом против вирусов

Проведение дезинфекции икры радужной форели раствором препарата йодинол в течение 30 мин. на этапе активации и набухания, обеспечивают высокую сохранность икры, личинок и молоди при выращивании в УЗВ в течение 3 мес. Показана высокая эффективность использования раствора препарата йодинол (100 мг/мл активного йода) для обработки оплодотворённой икры форели против вирусов инфекционного некроза гемопоэтической ткани и геморрагической септицемии.

1. Завьялова Е.В., Дрошнев А.Е., Богданова П.Д. и др. Анализ текущей эпизоотической ситуации по болезням рыб в России // Scientific Light. 2017. № 2. С. 47–51.

2. Лабораторный практикум по болезням рыб. / Под ред. Мусселиус В.А. М.: Лег. и пищ. промышленность, 1983. 296 c. Мохнач В.О. Йод и проблемы жизни. Л: Изд-во «Наука», 1974. 254 с.

3. Наумова А.М., Наумова А.Ю., Логинов Л.С. Эпизоотологический мониторинг рыбоводных хозяйств и рыбопромысловых водоёмов России // Труды ВНИРО. 2016. Т. 162. С. 97–103.

4. Приказ Минсельхоза России о т 19.12.2011 № 476 «Об утверждении перечня заразных, в том числе особо опасных, болезней животных, по которым могут устанавливаться ограничительные мероприятия (карантин)». (Электронный ресурс) – URL: https://rsnadzor.ru/f/perechen_476.pdf (дата обращения 25.05.2023).

5. Рахконен Р., Веннерстрем П., Ринтамяки П., Каннел Р. Здоровая рыба. Профилактика, диагностика и лечение болезней. Хельсинки, Изд-во: НИИ охотничьего и рыбного хозяйства Финляндии, 2013. 181 с.

6. Рудакова С.Л. Профилактика и контроль распространения вирусных болезней на предприятиях аквакультуры // Современное состояние и развитие аквакультуры: экологическое и ихтиопатологическое состояние водоёмов и объектов разведения, технологии выращивания. Материалы международной конференции. Новосибирск, Издательство: ФГБОУ ВО Новосибирский ГАУ, 2020. С. 134–136.

7. Рудакова С.Л., Бочкова Е.В., Волкова Т.В. и др. Модификация метода профилактической обработки икры нерки йодинолом от IHNV на ЛРЗ Камчатки // Труды ВНИРО. 2020. Т. 182. С. 141–151.

8. Рудакова С.Л., Щелкунова Ю.П., Новосёлова Ю.А. и др. Предварительные результаты по использованию йодинола для профилактики инфекционного некроза гемопоэтической ткани у радужной форели (экспериментальные данные) // Водные биологические ресурсы России: состояние, мониторинг, управление. Сборник материалов II Всероссийской научной конференции, посвящённой 90-летию Камчатского филиала «ВНИРО». Петропавловск-Камчатский, Издательство: Камчатский филиал ФГБНУ «ВНИРО», 2022. С. 195– 199.

9. Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. М.: Отдел маркетинга АМБагро, 1998. 510 с.

10. Ahne W., Held C. Untersuchungen über die viruzide Wirkung von Actomar K30™ auf fischpathogene Viren // Tierärztliche Umschau: Zeitschrift für alle Gebiete der Veterinärmedizin. Konstanz, Germany, 1980. V. 35. P. 308–318.

11. Ahne W., Kelly R.K. Factors affecting the transmission and outbreak of infectious pancreatic necrosis (IPN). In: Lillelund K., Rosenthal H. (eds.) // Fish Health Protection Strategies. Bonn: BMFT, 1989. P. 19–67.

12. Amend D.F. Comparative toxicity of two iodophors to rainbow trout eggs // Transaction of the American Fisheries Society. 1974. V. 103. N. 1. P. 73–78.

13. Aquatic Animal code (Электронный ресурс). URL: https://rr-africa.woah.org/wpcontent/uploads/2022/09/en_csaa-2022.pdf (дата обращения 31.05.2023 г.)

14. Batts W.N. Factors affecting the binding of IHN virus to salmonid sperm cells // Fish Health Section, American Fisheries Society Newsletter 15. 1987. P. 3.

15. Batts W.N., Landolt M.L., Winton J.R. Inactivation of Infectious Hematopoietic Necrosis Virus by low levels of iodine // Applied and Environmental Microbiology. 1991. V. 57. N. 5. P. 1379–1385.

16. Bullock G.L., Rucker R.R., Amend D.H. et al. Infectious pancreatic necrosis: transmission with iodinetreated and nontreated eggs of brook trout (Salvelinus fontinalis) // Jо. Fisheries Research Board of Canada. 1976. V. 33. P. 1197–1198.

17. Chalupnicki Marc A., Ketola H.George, Starliper Clifford E. et al. Efficacy and Toxicity of Iodine Disinfection of Atlantic Salmon Eggs // North American Jо. Aquaculture. 2011. V. 73 (2). P. 124–128.

18. Dorson M., Rault P., Haffray P. et al. Waterhardening rainbow trout eggs in the presence of an iodophor fails to prevent the experimental egg transmission of infectious pancreatic necrosis virus. Bull. European Association of Fish Patholologists. 1997. V. 17. N. 1. P. 13–16.

19. Eskildsen U.K., Vestergaard Jorgensen P.E. Jodophorer som desinfektionsmiddel i dambrugene // Ferskvandsfiskeribladet. 1974. V. 12. P. 152–155.

20. Goldes S.A., Mead S.L. Efficacy of iodophor disinfection against egg surface-associated infectious hematopoietic necrosis virus // The Progressive Fish Culturist. 1995. V. 57. N. 1. Р. 26– 29.

21. Groocock G.H., Getchell R.G., Cornwell E.R. et al. Iodophor Disinfection of Walleye Eggs Exposed to Viral Hemorrhagic Septicemia Virus Type IVb // North American Jо. Aquaculture. 2013. V. 75. N. 1. P. 25–33.

22. Jensen O.T., Sweeten T., Damon W., McLean W.E. Salmonid egg research at the Pacific Biological Station (2002 to 2004), with special interest in Atlantic salmon (Salmo salar) // Canadian technical report of fisheries and aquatic sciences 2838. Canada. 2009. P. 54.

23. Mulcahy D., Pascho R.J. Adsorption to fish sperm of vertically transmitted fish viruses // Science. 1984. V. 225. P. 333–335.

24. Wood J.W. Diseases of Pacific salmon, their prevention and treatment // St. Washington, Department of Fisheries, Hatchery Division. 1979. P. 39.

25. Yoshimizu M., Sami M., Kimura T. Survivability of infectious hematopoietic necrosis virus in fertilized eggs of masu and chum salmon // Aquatic Animal Health. 1989. V. 1. P. 13–20.