Генетические и рыбоводно-биологические исследования осетровых видов рыб для целей искусственного воспроизводства

Рассмотрены результаты нерестовой кампании с использованием производителей белуги и русского осетра, потомство которых выращено в индустриальных условиях и выпущено в водный объект рыбохозяйственного значения. Приведена генетическая и рыбоводно-биологическая оценка производителей осетровых видов рыб для целей искусственного воспроизводства. Выявлены показатели генетической характеристики производителей рыб. Определено, что у производителей белуги по причине высокой гомозиготности вида необходимо тщательно осуществлять подбор родительских групп с учётом генетических характеристик особей для избегания близкородственных скрещиваний и использовать родительские пары, а не группы. У производителей русского осетра за счёт высокой численности производителей есть возможность выбора, которая позволяет брать пары особей с наименьшим числом общих аллелей для получения генетически разнообразного потомства. Рыбоводно-биологические исследования производителей белуги показали тенденцию снижения репродуктивных показателей в зависимости от количества генераций в заводских условиях, у производителей русского осетра показатели групп самок со II и III генерациями потомства были практически идентичными, с небольшими отклонениями друг от друга. Практическая значимость определяется в рациональном и эффективном использовании рыбоводного и генетического потенциала производителей в целях получения наиболее генетически разнообразной молоди, что в итоге положительно повлияет как на сохранение генофонда популяций осетровых видов рыб, так и на выживаемость потомства на этапе выращивания. 

1. Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Использование микросателлитных локусов для установления видовой принадлежности осетровых (Acipenseridae) и выявления особей гибридного происхождения // Генетика. 2013. Т. 4. № 9. С. 1093–1105.

2. Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Природный генетический полиморфизм и филогеография сибирского осетра Acipenser baerii Brandt, 1869 // Генетика. 2017. Т. 53. № 3. С. 345–355.

3. Детлаф Т.А., Гинзбург А.С., Шмальгаузен О.И. Развитие осетровых рыб. Созревание яиц, оплодотворение, развитие зародышей и предличинок. М.: Наука, 1981. 224 с.

4. Досаева В.Г., Кириллов Д.Е., Отпущенникова В.Л. и др. Результаты искусственного воспроизводства осетровых видов рыб на осетровых рыбоводных заводах Астраханской области // Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации: Материалы V национальной научно-практической конференции, Калининград, 22–23 октября 2020 года / Под редакцией А.А. Васильева. Калининград: Общество с ограниченной ответственностью «Амирит», 2020. С. 88–93. EDN OFMYIJ.

5. Казанский Б.Н., Феклов Ю.А., Подушка С.Б. и др. Экспресс-метод определения степени зрелости гонад у производителей осетровых // Рыбн. хозяйство. 1978. № 2. С. 24–27.

6. Макарова Е.Г., Козлова Н.В. Генетический мониторинг осетровых рыб в условиях искусственного воспроизводства Астраханской области // Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2023. Т. 17, № 7 (210). С. 446-457. DOI: 10.33920/sel-09-2307-02.

7. Методика генотипирования производителей и молоди осетровых видов рыб с целью проведения гене тического мониторинга искусственного воспроизводства. М.: ВНИРО, 2012. 28 с.

8. Методические рекомендации по применению сурфагона для стимуляции созревания самок и самцов осетровых рыб на рыбоводных заводах дельты Волги / Сост. И.В. Тренклер. Санкт-Петербург: ВИС, 2010. 44 с.

9. МР 4.2.001–2015. Методики молекулярногенетического анализа водных биоресурсов и объектов аквакультуры, а также продукции из них. М.: ВНИРО, 2015. 23 с.

10. Мюге Н.С., Барминцева А.Е. Геномные исследования для сохранения осетровых: анализ наследования полиплоидных локусов и разработка панели маркеров для идентификации гибридов осетровых и продукции из них // Вестник Российского фонда фундаментальных исследований. 2020. №2 (106). С. 78–87. DOI: 10.22204/2410-4639-2020-106-02-78-87.

11. Мюге Н.С., Барминцева А.Е., Расторгуев С.М. и др. Полиморфизм контрольного региона митохондриальной ДНК восьми видов осетровых и разработка системы ДНКидентификации видов // Генетика. 2008. Т. 44. № 7. С. 913–919.

12. Персов Г.М. Учёт осетроводных работ в связи с применением метода гипофизарных инъекций // Метод гипофизарных инъекций и его роль в воспроизводстве рыбных запасов: Работы Лаборатории динамики развития организма и основ рыболовства. Л.: ЛГУ, 1941. С. 42–50.

13. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб (преимущественно пресноводных). М.: Пищевая промышленность, 1966. 377 с.

14. Приказ Министерства сельского хозяйства РФ от 25 августа 2015 г. № 377 «О внесении изменений в Методику расчёта объёма добычи (вылова) водных биологических ресурсов, необходимого для обеспечения сохранения водных биологических ресурсов и обеспечения деятельности рыбоводных хозяйств, при осуществлении рыболовства в целях аквакультуры (рыбоводства), утверждённую приказом Минсельхоза России от 30 января 2015 г.» (Электронный ресурс). 2015. URL: https://base.garant.ru/71234322/ (дата обращения 12.07.2020).

15. Руководство по ветеринарно-санитарному контролю племенных рыбоводных хозяйств / Министерство сельского хозяйства Российской Федерации; (подготовили: А. М. Наумова и др.). Москва: ФГБНУ «Росинформагротех», 2018. 51 с.

16. Способ получения икры от самок осетровых рыб: а. с. SU 1412035 A1 СССР, МПК A01K 61/00 / С.Б. Подушка. № 4151330/13; заявл. 24.11.86; опубл. 20.04.2008, Бюл. № 11.

17. Чебанов М.С., Галич Е.В. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб: Технический доклад ФАО по рыбному хозяйству № 558. Анкара: Продовольственная и сельскохозяйственная организация ООН, 2013. 325 с.

18. Чебанов М.С., Галич Е.В., Чмырь Ю.Н. Руководство по разведению и выращиванию осетровых рыб. М.: Росинформагротех, 2004. 148 с.

19. Ivanova N.V., de Waard J.R., Hebert P.D.N. An inexpensive, automation friendly protocol for recovering high quality DNA // Molecular Ecology Notes. 2006. V. 6. P. 998–1002.

20. Peakall R., Smouse P.E. GENALEX 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. // Molecular Ecology Notes. 2006. V. 6. P. 288–295.

21. Pritchard J.K., Stephens M., Donnelly P. Inference of population structure using multilocus genotype data //Genetics. 2000. V. 155. P. 945–959.

22. Tamura K., Peterson D., Peterson N. et al. MEGA5: Molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods // Molecular Biology Evolution. 2011. V. 28 (10). P. 2731–2739.