GENETIC AND FISH-BREEDING BIOLOGICAL RESEARCH ON STURGEON SPECIES FOR THE PURPOSE OF ARTIFICIAL REPRODUCTION

The results of the spawning campaign using producers of beluga and Russian sturgeon, whose offspring were grown in industrial conditions and released into a water body of fishery importance, are considered. A genetic and fish-breeding-biological assessment of producers of sturgeon species for the purposes of artificial reproduction is given. Indicators of genetic characteristics of fish producers have been revealed. It has been determined that beluga producers have a reason for If the homozygosity of the species is high, it is necessary to carefully select parent groups taking into account the genetic characteristics of individuals to avoid closely related crosses and to use parental pairs rather than groups. Due to the high number of breeders, Russian sturgeon producers have a choice that allows them to take pairs of individuals with the least number of common alleles to obtain genetically diverse offspring. Fishbreeding and biological studies of beluga producers showed a tendency to reduce reproductive indicators depending on the number of generations in factory conditions, in Russian sturgeon producers the indicators of females with the second and third generations of offspring were almost identical, with slight deviations from each other. The practical significance is determined in the rational and effective use of the fish-breeding and genetic potential of producers in order to obtain the most genetically diverse juveniles, which will ultimately have a positive impact both on the preservation of the gene pool of sturgeon populations and on the survival of offspring at the rearing stage.

1. Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Использование микросателлитных локусов для установления видовой принадлежности осетровых (Acipenseridae) и выявления особей гибридного происхождения // Генетика. 2013. Т. 4. № 9. С. 1093–1105.

2. Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Природный генетический полиморфизм и филогеография сибирского осетра Acipenser baerii Brandt, 1869 // Генетика. 2017. Т. 53. № 3. С. 345–355.

3. Детлаф Т.А., Гинзбург А.С., Шмальгаузен О.И. Развитие осетровых рыб. Созревание яиц, оплодотворение, развитие зародышей и предличинок. М.: Наука, 1981. 224 с.

4. Досаева В.Г., Кириллов Д.Е., Отпущенникова В.Л. и др. Результаты искусственного воспроизводства осетровых видов рыб на осетровых рыбоводных заводах Астраханской области // Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации: Материалы V национальной научно-практической конференции, Калининград, 22–23 октября 2020 года / Под редакцией А.А. Васильева. Калининград: Общество с ограниченной ответственностью «Амирит», 2020. С. 88–93. EDN OFMYIJ.

5. Казанский Б.Н., Феклов Ю.А., Подушка С.Б. и др. Экспресс-метод определения степени зрелости гонад у производителей осетровых // Рыбн. хозяйство. 1978. № 2. С. 24–27.

6. Макарова Е.Г., Козлова Н.В. Генетический мониторинг осетровых рыб в условиях искусственного воспроизводства Астраханской области // Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2023. Т. 17, № 7 (210). С. 446-457. DOI: 10.33920/sel-09-2307-02.

7. Методика генотипирования производителей и молоди осетровых видов рыб с целью проведения гене тического мониторинга искусственного воспроизводства. М.: ВНИРО, 2012. 28 с.

8. Методические рекомендации по применению сурфагона для стимуляции созревания самок и самцов осетровых рыб на рыбоводных заводах дельты Волги / Сост. И.В. Тренклер. Санкт-Петербург: ВИС, 2010. 44 с.

9. МР 4.2.001–2015. Методики молекулярногенетического анализа водных биоресурсов и объектов аквакультуры, а также продукции из них. М.: ВНИРО, 2015. 23 с.

10. Мюге Н.С., Барминцева А.Е. Геномные исследования для сохранения осетровых: анализ наследования полиплоидных локусов и разработка панели маркеров для идентификации гибридов осетровых и продукции из них // Вестник Российского фонда фундаментальных исследований. 2020. №2 (106). С. 78–87. DOI: 10.22204/2410-4639-2020-106-02-78-87.

11. Мюге Н.С., Барминцева А.Е., Расторгуев С.М. и др. Полиморфизм контрольного региона митохондриальной ДНК восьми видов осетровых и разработка системы ДНКидентификации видов // Генетика. 2008. Т. 44. № 7. С. 913–919.

12. Персов Г.М. Учёт осетроводных работ в связи с применением метода гипофизарных инъекций // Метод гипофизарных инъекций и его роль в воспроизводстве рыбных запасов: Работы Лаборатории динамики развития организма и основ рыболовства. Л.: ЛГУ, 1941. С. 42–50.

13. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб (преимущественно пресноводных). М.: Пищевая промышленность, 1966. 377 с.

14. Приказ Министерства сельского хозяйства РФ от 25 августа 2015 г. № 377 «О внесении изменений в Методику расчёта объёма добычи (вылова) водных биологических ресурсов, необходимого для обеспечения сохранения водных биологических ресурсов и обеспечения деятельности рыбоводных хозяйств, при осуществлении рыболовства в целях аквакультуры (рыбоводства), утверждённую приказом Минсельхоза России от 30 января 2015 г.» (Электронный ресурс). 2015. URL: https://base.garant.ru/71234322/ (дата обращения 12.07.2020).

15. Руководство по ветеринарно-санитарному контролю племенных рыбоводных хозяйств / Министерство сельского хозяйства Российской Федерации; (подготовили: А. М. Наумова и др.). Москва: ФГБНУ «Росинформагротех», 2018. 51 с.

16. Способ получения икры от самок осетровых рыб: а. с. SU 1412035 A1 СССР, МПК A01K 61/00 / С.Б. Подушка. № 4151330/13; заявл. 24.11.86; опубл. 20.04.2008, Бюл. № 11.

17. Чебанов М.С., Галич Е.В. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб: Технический доклад ФАО по рыбному хозяйству № 558. Анкара: Продовольственная и сельскохозяйственная организация ООН, 2013. 325 с.

18. Чебанов М.С., Галич Е.В., Чмырь Ю.Н. Руководство по разведению и выращиванию осетровых рыб. М.: Росинформагротех, 2004. 148 с.

19. Ivanova N.V., de Waard J.R., Hebert P.D.N. An inexpensive, automation friendly protocol for recovering high quality DNA // Molecular Ecology Notes. 2006. V. 6. P. 998–1002.

20. Peakall R., Smouse P.E. GENALEX 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. // Molecular Ecology Notes. 2006. V. 6. P. 288–295.

21. Pritchard J.K., Stephens M., Donnelly P. Inference of population structure using multilocus genotype data //Genetics. 2000. V. 155. P. 945–959.

22. Tamura K., Peterson D., Peterson N. et al. MEGA5: Molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods // Molecular Biology Evolution. 2011. V. 28 (10). P. 2731–2739.